Ugrás a tartalomra

Tetrahymena pyriformis

Kép forrása
BME
Leírás szerzője
Varga Bálint

Tesztorganizmus neve

Latin név

Tetrahymena pyriformis

Magyar név

Tetrahymena pyriformis

Angol név

Tetrahymena pyriformis

Rendszertani besorolás 

-          ország

Protozoa [5]

-          törzs

Ciliophora [5]

-          osztály

Oligohymenophorea [5]

-          rend

Hymenostomatida [5]

-          család

Tetrahymenidae [5]

-          nemzetség/nem

 

-          faj

Tetrahymena pyriformis

Tesztorganizmus jellemzői 

Élőhely

víz

Fontosabb külső jegyek

25–90 μm hosszú, körte alak, sejtszáj négy mozgó hártyaszerű képlet, sűrű hajszerű bevonatot alkotnak a csillók [2]

Táplálkozás

kisebb élőlények [5]

Szaporodás

csillósok ált. ivartalanul szaporodnak, 3-4 óra alatt megkétszereződnek (ideális körülmények között) [5]

Egyéb fontosabb jellemzők

Kedvelik mert rövid a periódus ideje és ennek a fajnak a reagálása hasonlít legjobban a nagyobb rendű állatok sejtjeinek reagáláshoz. Kommenzalizmus, mint populációs kölcsönhatás jellemző rá. [1], [6]

Szabványok és referenciák

Szabványosított tesztmódszer?

nem [1]

Szabvány típusa, száma

 

Nem szabványos tesztmódszerek

 

Környezettoxikológiai alkalmazás 

Tesztorganizmus fenntartása

vizes élőhely, 28 °C-on sötét helyen, PP tápoldatban [2], [1]

Teszteléshez használt organizmus jellemzői

fenntartás és inkubálás is 28 °C-on sötét helyen, kora ne legyen több 6 hetesnél, pH kb. 7,35; ne legyen rázatás se szellőztetés [2]

Tesztorganizmus érzékenysége

vízben oldható szennyezőanyagok [2], n-oktanol, 2,4-DCP; 2,4-DNP; ciklohexán, 2-metilfenol; 3-metilfenol; 4-metilfenol; 3,4-dimetilfenol; 3-hidroxidpiridin, 2-klorid-3,5-dinitropiridin[1], [6]

Tesztmódszer alkalmassága

víz, talaj

Tesztelés elve

sejtszám változás, szaporodás gátlás [1]

Tesztmódszer leírása

Sejtszuszpenzió elkészítése (50 cm3 PP-tápoldat + 2 cm3 sejtszuszepnzió). 16 óra múlva ebből kémcsőbe helyezünk 5 cm3-t. Ezt hígítjuk majd felöntjük a vizsgálandó oldattal. 48 óra inkubálás következik. A kémcsövek felső rétegéből mintát veszünk amit 1 %-os formaldehiddal rögzítünk. Ebben az oldatban számláljuk a tesztorganizmust Bürker-kamrában. Kontrollhoz viszonyítunk. [2],[3],[4]

Mérési végpontok

élő tesztorganizmusok száma

Vizsgálati végpontok

Leginkább LC50-t vagy EC50-t vizsgálnak. Az alábbi példák az [1] tanulmányból származnak.

n-oktanol: LC50=13,5 mg/L [1]

2,4-DCP: LC50=9,19 mg/L [1]

2,4-DNP: LC50=14,4 mg/L [1]

 

Méréshez szükséges műszerek

Bürker kamra, Laborscale (PSL-1)-analisator (PSA-1)

Tesztek időigénye

48-66 óra, talajnál 72 óra, [1], [2]

Egyéb 

Megjegyzések

 

Szerző által felhasznált források

{1} JϕRGEN LARSEN, T.W. SCHULTZ, LEIF RASMUSSEN, RIA HOOFTMAN, WILFRIE PAULI (1997): PROGRESS IN AN ECOTOXICOLOGICAL STANDARD PROTOCOL WITH PROTOZOA: RESULTS FROM A PILOT RINGTEST WITH Tetrahymena pyriformis. Chemosphere, Vol. 35, No. 5, pp. 1023-1041. 1997

{2} Gruiz K., Horváth B., Molnár M. (2001) Környezettoxikológia, Vegyi anyagok hatása    a környezetre. Műegyetemi Kiadó, Budapest

{3} /keptar/5293

{4} /keptar/5270

{5} http://en.wikipedia.org/wiki/Tetrahymena

{6} Julie R. Seward a, Elizabeth L. Hamblen, T. Wayne  Schultz:Regression comparisons of Tetrahymena pyriformis and Poecilia reticulata toxicity. Chemosphere, Vol. 47, pp. 93–101. 2000