Lemna gibba

Kép forrása
http://en.wikipedia.org/wiki/File:L_gibba2.jpg
Leírás szerzője
Enyedi Zoltán

Tesztorganizmus neve

Latin név

Lemna gibba

Magyar név

púpos békalencse

Angol név

gibbous duckweed or fat duckweed

Rendszertani besorolás 

-          ország

magvas növények (spermatophyta) [1]

-          törzs

zárvatermők (angiospermaphytina) [1]

-          osztály

egyszikűek (monocotyledonopsida) [1]

-          rend

kontyvirágúak (arales) [1]

-          család

békalencsefélék (lemnaceae) [1]

-          nemzetség/nem

békalencse (lemna) [1]

-          faj

púpos békalencse (lemna gibba)

Tesztorganizmus jellemzői 

Élőhely

Mérsékelt égövi területeken, (Európában, Afrikában, Észak-és Dél-Amerikában, Himalája alsóbb vízfolyásain) [3]

Állóvizek vagy lassan mozgó nagy tápanyagtartalmú folyóvizek vízfelszíne (úszónövény) [3]

Fontosabb külső jegyek

3-5 mm átmérőjű, kerekded alakúak, felső részük élénkzöld színű,

Táplálkozás

 

Szaporodás

Osztódással szaporodik, [2]

Kettőződés ideje 0,35-2,8 nap

Egyéb fontosabb jellemzők

Szabadon lebeg, erősen burjánzik [2]

Egyszikű, lágy szárú növény, [3]

Erős fényigényű, [3]

Tartási hőmérséklete 15-25°C-os víz, [3]

Levél része élénkzöld színű, [3]

Nagyon ritkán virágzik, akkor sem látni [2]

Szabványok és referenciák

Szabványosított tesztmódszer?

igen

Szabvány típusa, száma

ASTM E1415 – 91 (2004) – e1 [6]

OECD Test No. 221 [7]

MSZ EN ISO 20079:2006 (Lemna minorra vonatkoztatva)

[11]

Nem szabványos tesztmódszerek

Homeopátiás tesztorganizmus [4]

Kemikáliák növényekre vonatkoztatott toxikusságának meghatározására (Növekedés) [5]

Réz és nikkel bioakkumulációjának meghatározása [5]

Környezettoxikológiai alkalmazás [7] és [8] 

Tesztorganizmus fenntartása

4-10°C, enyhe fény mellett, ha van szennyezett kultúra, új steril táptalajra kell önteni, a szennyezett kultúrát megsemmisíteni

Teszteléshez használt organizmus jellemzői

lemna minor vagy lemna gibba,

2 levelű növényminta

Tesztorganizmus érzékenysége

Vizet szennyező kemikáliák, fémek általános toxicitására.

Tesztmódszer alkalmassága

Alkalmas felszíni és felszín alatti élővizek toxikusságának tesztelésére (pl. fémek, szervetlen szennyezők)

Tesztelés elve

A mintákba és a kontrol mintákba azonos mennyiségű 2 levéllel rendelkező egyedet helyezünk, és adott körülmények mellett adott idő (7 nap) elteltével számoljuk meg a mintákban és a kontroll mintákban is a kinőtt levelek számát. A kinőtt levelek számából következtethetünk a minta növekedésgátlására.

Tesztmódszer leírása

150 ml párhuzamos mintákban és párhuzamos kontroll mintákban a teszt kezdete után 7 nap elteltével a levelek számának változásából következtethető a gátlási %-ra a követező összefüggések segítségével:

 

,ahol

µ=növekedési sebesség

Ft: az edényben lévő levélszám t idő elteltével

F0: a edényben lévő levélszám a vizsgálat kezdetén

t: a vizsgálat ideje

 

amiből meghatározhatjuk a duplázódási időt:

, ahol

TD: duplázódási idő

µ: növekedési sebesség

 

illetve számolható a minta/referencia %-os növekedési gátlása:

, ahol

µk: növekedési sebesség a kontroll mintában

µt: növekedési sebesség a mintában

%Ir: átlagos növekedési %-os gátlás

Mérési végpontok

Levelek száma, biomassza nedves tömege, összklorofill tartalom

Vizsgálati végpontok

Metil-mezoszulfuron (CAS: 5585-64-8): 7 napos akut kontaminációs teszt EC50 0,62µg/l-es oldat. [9]

Roundup® Ultra 3000,Összetétel: Izopropilamin-glifoszfát (CAS: 38641-94-0) és víz: 72 órás akut kontaminációs teszt EC50 284 mg/l [10]

2,4-diklór-fenoxiecetsav (94-75-7): 14 napos akut kontaminációs teszt: 0,58 mg/l [12]

Calaris készítmény: 7 napos akut kontaminációs teszt: 0,114 mg/l [13]

Hurrikán Neo Zn gyomírtó készítmény: 7 napos akut kontaminációs teszt: 2,8-8 g/l [14]

Méréshez szükséges műszerek

mikroszkóp

Tesztek időigénye

7 nap

Egyéb 

Megjegyzések

-